Table of Contents Table of Contents
Previous Page  154 / 220 Next Page
Information
Show Menu
Previous Page 154 / 220 Next Page
Page Background

Dual Lab Validation of a Method for the Determination of Fructans in Infant 

Formula & Adult Nutritionals /        

25 Jul 2016

44 

With respect to sample 14, it should be noted that the low level fructan addition results in an very 

small increase in the fructan concentration which is less than the LOQ value of the method. 

In general it can be concluded that the established recoveries are within the SMPR target range. 

f.

Specificity 

In this specificity study different pure carbohydrates (disaccharides, oligosaccharides and starch) have 

been subjected to the fructan analytical protocol. The aim of these analyzes is to assess whether, and 

if so, to what extent, these non‐fructan carbohydrates contribute to falsely too high measured fructan 

levels. To this end, a number of pure carbohydrate components with a test portion of 0.5 gram, has 

been analyzed by using the fructan analysis method. 

The analytical results are expressed in different ways.  

Firstly

 it is was calculated as a 4 gram liquid or reconstituted sample was analyzed. In that way the 

above applied test portion of 0.5 gram pure carbohydrate components simulates the presence of this 

constituent of 0.5/4 x 100% = 12.5 % level in a 4 gram liquid (reconstituted) test sample. 

Secondly

 the result was expressed as the fructan content in the dry product, thus in 100% investigated 

matrix. 

Moreover two different procedures have been followed for measuring and quantifying the fructan 

content. The standard procedure, as given in the protocol, is the 

“no A0 correction”

 columns. In the 

other procedure, 

“with A0 correction”

, a blank subtraction step was introduced. In that case the 

analytical protocol has been extended with a blanc measurement before incubating the processed 

sample with the enzyme fructanase.  This blanc measurement is done directly after the graphitized 

carbon solid phase extraction (GC‐SPE) procedure. After the GC‐SPE the sample is split in two aliquots. 

One aliquot is treated with the fructanase exactly conform the protocol and analyzed. In the other 

aliquot no fructanase hydrolysis is carried out but is directly analyzed with the HPAEC‐PAD as a blank 

measurement. Then final fructan content is calculated by subtracting the blank result from the result 

obtained with the standard procedure. The difference is the amount of fructose and glucose which are 

set free by the fructanase hydrolysis. In that way easily can be corrected amongst others for 

chromatographic peaks which coincide with either fructose and glucose without being fructose or 

glucose. 

The results are presented in table 8. 

Looking to the results in the column “expressed in liquid sample” it can be concluded that, with the 

exception of Litesse II polydextrose, applying the standard protocol without blank correction (“no A0 

correction”) of all potential interferences (at the high 12,5 % level in the sample to analyze!) the 

erroneously measured fructan contents are less than the LOQ and therefore of no concern. For the 

Litesse II polydextrose the erroneously measured fructan content is at the level of the LOQ. 

In the table for the constituents Vivinal GOS and Litesse II polydextrose, the worst case scenario’s are 

presented. The chromatograms (figure 1 and 2) of these two constituents shows chromatographic 

signals near the fructose and glucose peaks with retention times which differs somewhat of the 

calibration standards. However in case the GOS and polydextrose constituents are present (at these 

high concentration levels!) in fructan containing samples, it is very likeable that these peaks cannot 

been distinguished from the fructose and glucose peaks coming from the hydrolyzed fructans.   

VALIDATION REPORT

FOR ERP USE ONLY

DO NOT DISTRIBUTE